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真相來了!為什么核酸檢測 “ 假陰性 ” 比例高?

2021/3/9





PCR
疫情中的PCR

隨著新冠病毒(COVID-19)的全球大流行,截至今天已經造成了1億人的累積確診,死亡人數更是超過了250萬https://coronavirus.jhu.edu/map.html。病毒核酸檢測是診斷新冠肺炎的主要方法,逆轉錄定量聚合酶鏈式反應(RT-qPCR)是目前用于臨床核酸檢測最廣泛的方法。雖然RT-qPCR是檢測核酸的金標準,但是其他方法也應用于疫情的防控,其中包括了數字PCR(dPCR,digital PCR)技術,相比于qPCR,數字PCR是一項新興的核酸檢測技術,應用于核酸的絕對定量檢測,具有高靈敏度,高精確度的優點。



數字PCR和RT-qPCR核心都是基于聚合酶鏈式反應(Polymerase chain reaction),RT-qPCR又是在PCR技術的基礎上進行了改進,反應物中添加了熒光染料或利用熒光分子標記的探針,通過實時檢測熒光強度計算DNA模板的擴增量,從而實現對于核酸的定量檢測,實現相對定量的檢測。



而數字PCR基于限定稀釋的概念,將反應體系分割成無數小的反應體系(液滴/微室),每個體系中包含PCR反應的各項成分,經過熱循環反應后對液體的熒光值進行檢測,利用泊松分布計算陽性/陰性的反應體系數量,從而達到對靶標的檢測。相對于RT-qCPR數字PCR不需要校準曲線,其線性數字信號的讀出比qPCR指數放大信號更為準確,這一優勢使得dPCR在技術上優于qPCR。




雖然,RT-qPCR由于其技術上的限制以及樣本病毒量的限制,有出現假陰性的概率,已有多篇文獻報道SARS-CoV-2病毒檢測的不穩定性;影響假陰性RT-qPCR結果因素很多,包括了引物或靶位點突變,樣本獲取/處理不當,以及樣本中存在擴增抑制劑;而數字PCR屬于終點法檢測,對于反應過程中的抑制劑具有較高的敏感性和耐受性,已經被用于新冠病毒的檢測,以減少假陰性結果發生的概率;已有研究表明,經過RT-qPCR檢測的陰性樣本經過數字PCR檢測為陽性,表明了在低病毒樣本量的檢測中,數字PCR的優于RT-qPCR,現階段可以作為其補充。


由于數字PCR的絕對定量特性,即使病毒載量很小,也可以檢測出陽性樣本(低至數十拷貝),而目前疫情防控中,常常要做到如冷鏈產品,各種環境中病毒檢測,這類檢測中病毒載量極小,相比之下數字PCR的具有更好的優勢;

此外,由于新冠病毒屬于RNA病毒,具有較高的突變率;而數字PCR相對于RT-qPCR可以更好的檢測樣本的基因突變檢測,商業化的數字PCR系統檢測靈敏度高達0.01%,對于病毒的溯源和研究提供了良好的手段。





PCR
商業數字PCR的發展


1992年,Sykes等人基于限定稀釋的理論首次提出了數字PCR( digital PCR,dPCR )概念;隨后的1999年,Kinzler和Vogelstein首次使用“ digital PCR ”一詞發表論文,他們描述了通過對樣品進行分區來定量ras突變的方法,以便在微孔板中進行一系列PCR;而隨著技術的發展,數字PCR檢測通量進一步擴大;包括了在集成流路芯片上進行數字PCR反應,2006年Fluidigm基于這種芯片技術推出了第一臺商業化數字PCR系統,the BioMark?,該系統基于微芯片設計,具有小的腔室和閥門用于分割樣品和試劑;第一代芯片數字PCR使用陣列芯片,12通道,765分區;2009年,更新了第二代芯片,使用48通道,770分區,提高了吞吐量并降低了使用成本;同樣是2009年,Life Technologies推出了OpenArray? system,該系統采用了帶有超過3000μm大小的板,通過表面張力維持PCR混合物;2013年,推出了高密度納米流控芯片,可攜帶20000數據點,簡化了工作流程,極大降低了成本;2014年,Formulatrix推出了Constellation system 利用96孔板微流控系統,每孔包含496小室,可單獨進行PCR反應。

此外還有一種基于乳狀液珠包裹PCR反應物-液滴數字PCR的方法,液滴dPCR的工作流程包括了生成含有PCR反應物的水-油微滴,精確調節PCR和油脂化學的設備可以產生數千或者百萬納米升或皮升的均勻液滴,能夠通過微流控通道的快速流動和熱循環過程,而不會破裂或聚合。2011年,Bio-Rad公司推出了QX100 Droplets dPCR系統,利用探針法進行檢測;隨后推出的QX200微滴式數字PCR系統利用探針和嵌入式染料進行PCR檢測;兩個系統都可以產生大約20000納米級液滴,與早期PCR芯片相比成本極大降低;同樣是2012年,Rain Dance  Technologies推出了RainDrop? system可以產生百萬皮升級PCR混合液滴。

數字PCR的工作流程非常簡單;在芯片型dPCR系統中,PCR mix,PCR混合物通常在加載設備的幫助下分布在預制的隔板上,裝載的芯片置于循環加熱器上進行PCR反應,熱循環完成后,使用相機成像芯片對每個分區的熒光強度進行分析,將含有目標分子的分區(正分區)和沒有目標分子的分區(負分區)區別開來;基于歸一化的熒光強度信號,應用一個閾值來分配分區的正負。一些基于芯片的系統也會收集實時的數據,因此可以提供Cq值。




而對于液滴數字PCR系統,PCR混合物和油通常被移入濾筒的孔中,然后濾筒被轉移到專門設計的儀器中,在儀器中產生油包水乳狀液。液滴乳劑轉移到96孔板的孔中或管條中的管中,然后放入熱循環器進行PCR擴增;熱循環后,平板或管被轉移到液滴讀數儀器上,液滴被吸入并以類似流式細胞儀的方式快速流過熒光檢測器,用于測量每個液滴中的熒光。根據熒光信號,應用一個閾值將液滴分配到正或負液滴種群中。

數字PCR是一種絕對定量的終點檢測方法,可以提供超靈敏和絕對的核酸定量。這種技術對于低豐度目標、復雜背景下的目標、等位變異(SNPs)和監測目標水平的細微變化特別有用。隨著數字PCR技術的發展其應用范圍得到更廣闊的拓展,包括各種病原體的檢測,食品安全監督,水質檢測,微生物生態學研究;由于數字PCR具有較高的準確度,因此可以檢測出微小核酸分子的數量差異用于臨床研究,包括生物標志物的開發和檢測;癌癥患者基因組擴增窗臺和基因變異的檢測;遺傳篩查;基因組編輯,干細胞中單核苷酸的突變和拷貝數檢測;以及在移植受體這體內檢測移植物來源的DNA和嵌合體;因此領先的研究小組和生命科學工業界開發基于數字PCR技術的測試,將數字PCR技術用于分子診斷。


MicroDrop?是由永諾生物研發并投入生產的國內首款微滴式數字PCR檢測系統,是我國首款擁有完全自主知識產權的微滴式數字PCR儀,可廣泛應用于科研、醫療、出入境檢驗檢疫等領域。








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