真相來了!為什么核酸檢測 “ 假陰性 ” 比例高?
2021/3/9
隨著新冠病毒(COVID-19)的全球大流行,截至今天已經造成了1億人的累積確診,死亡人數更是超過了250萬(https://coronavirus.jhu.edu/map.html)。病毒核酸檢測是診斷新冠肺炎的主要方法,逆轉錄定量聚合酶鏈式反應(RT-qPCR)是目前用于臨床核酸檢測最廣泛的方法。雖然RT-qPCR是檢測核酸的金標準,但是其他方法也應用于疫情的防控,其中包括了數字PCR(dPCR,digital PCR)技術,相比于qPCR,數字PCR是一項新興的核酸檢測技術,應用于核酸的絕對定量檢測,具有高靈敏度,高精確度的優點。
數字PCR和RT-qPCR核心都是基于聚合酶鏈式反應(Polymerase chain reaction),RT-qPCR又是在PCR技術的基礎上進行了改進,反應物中添加了熒光染料或利用熒光分子標記的探針,通過實時檢測熒光強度計算DNA模板的擴增量,從而實現對于核酸的定量檢測,實現相對定量的檢測。
而數字PCR基于限定稀釋的概念,將反應體系分割成無數小的反應體系(液滴/微室),每個體系中包含PCR反應的各項成分,經過熱循環反應后對液體的熒光值進行檢測,利用泊松分布計算陽性/陰性的反應體系數量,從而達到對靶標的檢測。相對于RT-qCPR數字PCR不需要校準曲線,其線性數字信號的讀出比qPCR指數放大信號更為準確,這一優勢使得dPCR在技術上優于qPCR。
雖然,RT-qPCR由于其技術上的限制以及樣本病毒量的限制,有出現假陰性的概率,已有多篇文獻報道SARS-CoV-2病毒檢測的不穩定性;影響假陰性RT-qPCR結果因素很多,包括了引物或靶位點突變,樣本獲取/處理不當,以及樣本中存在擴增抑制劑;而數字PCR屬于終點法檢測,對于反應過程中的抑制劑具有較高的敏感性和耐受性,已經被用于新冠病毒的檢測,以減少假陰性結果發生的概率;已有研究表明,經過RT-qPCR檢測的陰性樣本經過數字PCR檢測為陽性,表明了在低病毒樣本量的檢測中,數字PCR的優于RT-qPCR,現階段可以作為其補充。
此外,由于新冠病毒屬于RNA病毒,具有較高的突變率;而數字PCR相對于RT-qPCR可以更好的檢測樣本的基因突變檢測,商業化的數字PCR系統檢測靈敏度高達0.01%,對于病毒的溯源和研究提供了良好的手段。
數字PCR的工作流程非常簡單;在芯片型dPCR系統中,PCR mix,PCR混合物通常在加載設備的幫助下分布在預制的隔板上,裝載的芯片置于循環加熱器上進行PCR反應,熱循環完成后,使用相機成像芯片對每個分區的熒光強度進行分析,將含有目標分子的分區(正分區)和沒有目標分子的分區(負分區)區別開來;基于歸一化的熒光強度信號,應用一個閾值來分配分區的正負。一些基于芯片的系統也會收集實時的數據,因此可以提供Cq值。
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